Abstract
乙型肝炎是一个全球性的公共卫生问题。通过接种乙肝疫苗诱导机体产生乙型肝炎表面抗体(hepatitis B surface antibody,HBsAb)是预防乙型肝炎的重要措施。然而,不同个体对乙肝疫苗的免疫应答水平存在差异。根据HBsAb水平的不同,可以将个体分为高应答、低应答和无应答。T细胞及其亚群在这一免疫调节过程中起重要作用,同时T细胞受体(T cell receptor,TCR)免疫组库的构成也影响机体的免疫应答水平。探究接种乙肝疫苗后差异性免疫应答个体T细胞、T细胞亚群及TCR免疫组库的特征,有望为优化乙肝疫苗和制订更有效的接种策略提供理论支持。
Keywords: 乙肝疫苗, T细胞, 免疫应答, 免疫组库, 免疫组库测序, T细胞受体, 乙型肝炎表面抗体
Abstract
Hepatitis B is a global public health concern. Inducing hepatitis B surface antibody (HBsAb) through vaccination is a crucial preventive strategy. However, individuals show varying immune responses to the hepatitis B vaccine. Based on HBsAb levels, individuals can be categorized as high responders, low responders, or non-responders. T cells and their subsets play critical roles in modulating this response, and the composition of the T cell receptor (TCR) repertoire also influences immune responsiveness. Investigating the characteristics of T cells, their subsets, and TCR repertoires in individuals with differential responses post-vaccination may provide theoretical guidance for optimizing vaccine design and immunization strategies.
Keywords: hepatitis B vaccine, T cells, immune response, immune repertoire, immune repertoire sequencing, T cell receptor, hepatitis B surface antibody
乙型肝炎病毒(hepatitis B virus,HBV)是一种DNA病毒,主要经血液、母婴和性接触等途径传播,引起急、慢性肝炎性病变。在中国,HBV感染高发,平均每年约有16万人死于与HBV感染相关的疾病 [ 1 ] 。由HBV引起的慢性乙型肝炎(chronic hepatitis B,CHB)具有进程长和难治愈的特点,因此HBV的防治方针是“预防为主,防治结合”。自1992年起,中国在全国范围内推行乙肝疫苗接种工作,使得乙型肝炎表面抗原(hepatitis B surface antigen,HBsAg)的携带率显著下降 [ 2 ] 。乙型肝炎表面抗体(hepatitis B surface antibody,HBsAb)水平是衡量疫苗接种效果的主要指标。接种疫苗后HBsAb水平高于100 mIU/mL,则说明疫苗可以产生保护性作用,能有效预防HBV感染 [ 3 ] 。根据HBsAb滴度的不同,可将应答水平分为:高应答(滴度≥1 000 mIU/mL)、正常应答(100≤滴度<1 000 mIU/mL)、低应答(10≤滴度<100 mIU/mL)、无应答(滴度<10 mIU/mL)。研究 [ 4 ] 表明:即使按照流程接种疫苗,也只有约90%的人产生HBsAb,其中10%~20%的人所产生的保护性抗体水平较低,呈现低应答状态。约有10%的健康人群不产生HBsAb,表现为无应答状态 [ 5 - 6 ] 。
T细胞是介导机体免疫应答的关键细胞之一。机体接种乙肝疫苗后,抗原呈递细胞(antigen presenting cell,APC)捕获疫苗并将其水解为抗原肽。抗原肽与APC表面分泌的主要组织相容性复合体II(major histocompatibility complex II,MHC-II)分子结合形成抗原肽-MHC-II分子复合物,并被分泌到APC表面。随后,该复合物与T细胞受体(T cell receptor,TCR)相互作用,促使T细胞分化为不同的亚群。根据细胞表面因子的差异,可将T细胞划分为CD4 + 和CD8 + T细胞。这些细胞在细胞因子和微环境的作用下进一步分化为辅助性T(helper T,Th)细胞、调节性T(regulatory T,Treg)细胞、细胞毒性T淋巴细胞(cytotoxic T lymphocyte,CTL)等亚群。TCR和抗原的特异性结合与机体的免疫应答有关。T细胞上的TCR特异性结合抗原肽-MHC-II分子复合物并分化为各类亚群,调控B细胞分泌抗体,从而形成完整的机体免疫。然而,不同个体间T细胞引发的对乙肝疫苗免疫应答差异的机制,目前尚未阐明。
1. 机体对乙肝疫苗的差异性免疫应答与 T 细胞及其亚群特征
接种乙肝疫苗后,T细胞及其亚群通过分泌特定的细胞因子刺激B细胞产生特异性抗体,从而提高体内HBsAb水平并维持免疫应答效果 [ 3 ] 。根据体内HBsAb水平不同,可将个体分为高、低、无应答者。这种现象的产生与T细胞介导的免疫应答密切相关。
T细胞正反馈调节影响机体对乙肝疫苗的应答反应。一项研究 [ 7 ] 对正常应答者、无应答者的T细胞亚群进行分类计数,发现乙肝疫苗无应答者的CD69 + CD4 + T细胞在CD4 + T细胞中的占比显著低于正常应答者。CD69表达促进CD4 + T细胞的活化,无应答者CD69 + CD4 + T细胞数目不足提示其CD4 + T细胞早期活化不足,从而导致机体对乙肝疫苗的无应答。Seremba等 [ 8 ] 测定了乌干达132名人类免疫缺陷病毒(human immunodeficiency virus,HIV)感染者在接种第3针乙肝疫苗4周后的HBsAb滴度并进行T细胞计数,发现CD4 + T细胞计数与机体对乙肝疫苗的免疫应答水平之间存在关联,CD4 + T细胞计数低于200个/μL时,机体表现为低应答。Pollack等 [ 9 ] 分析研究了302名HIV感染者在接种乙肝疫苗后的免疫应答效果,发现存在189名有效应答者(HBsAb滴度> 10 mIU/mL),且女性患者应答率相对更高,有效应答者的CD4 + T细胞计数显著高于无应答者。另有研究 [ 10 ] 同样表明:CD4 + T细胞数目影响HIV感染者对疫苗的正常应答。这提示CD4 + T细胞计数水平与疫苗接种效果密切相关。
T细胞在接收抗原刺激信号后,通过分化成不同的亚群来完成相关应答,其中Th细胞、Treg细胞及CTL是起关键作用的亚群,这些亚群的正、负反馈调节均会影响机体的免疫应答水平。
1.1. 差异性免疫应答与 Th 细胞
Th细胞是一类能够分泌细胞因子并协助其他免疫细胞发挥功能的T细胞,通过细胞因子介导机体对疫苗的免疫应答。根据分泌的细胞因子的不同,Th细胞被分为Th1、Th2及Th17等亚型。Th1细胞可分泌干扰素-γ(interferon-γ,IFN-γ)、肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)及白细胞介素(interleukin,IL)-2等细胞因子;Th2细胞可刺激B细胞活化,促使其转化为浆细胞并分泌保护性抗体 [ 11 ] 。
为了探究免疫应答水平与Th细胞间的相关机制,Doedée等 [ 12 ] 收集了14名18~22岁的年轻人在接种加强疫苗前1个月和接种后1个月的血液样本,并对其中的HBsAg特异性T细胞进行了分选和细胞因子分析,结果表明:在2个时间点,高、低应答者间HBsAg特异性T细胞数量的差异没有统计学意义;但高应答者在接种后由CD4 + T细胞和Th2细胞产生的IL-13水平显著高于低应答者,而IL-13可诱导由CD40配体激活引起的B细胞的增殖和分化。这表明与低应答者相比,高应答者的Th2细胞活性更高,并可通过调控IL-13的水平影响B细胞的增殖和分化。此外,Sabry等 [ 13 ] 根据90名医护人员在接种第3剂乙肝疫苗2个月后的HBsAb滴度,将其分为低应答者、正常应答者和高应答者3组,并通过酶联免疫吸附试验分析这些人员血清中INF-γ和IL-13的表达水平,结果表明IFN-γ、IL-13的表达水平与HBsAb滴度呈显著正相关。IFN-γ主要由CD4 + 和CD8 + T细胞产生,能促进CD4 + T细胞向Th1细胞的分化和CD8 + T细胞的活化,从而引发机体的高免疫应答。
Th细胞在增强机体对疫苗的免疫应答的同时,也可通过降低细胞因子水平或生成部分抑制性细胞因子干扰特异性免疫应答的发生。有研究 [ 14 ] 对80名已经接种过3针乙肝疫苗的1~13岁儿童进行加强针的接种,结果发现:原本因Th细胞缺乏而无法产生足够IFN-γ的低应答儿童,在接种加强针后,其体内HBsAb水平显著上升,同时分泌IFN-γ的特异性Th细胞数量也显著增加。另一项研究 [ 15 ] 在接种乙肝疫苗的721名新生儿中筛选出30名无应答者和25名高应答者,发现无应答新生儿在Th1和Th2细胞免疫应答方面存在缺陷,相较于高应答新生儿,其IL-4、IL-10及IFN-γ的血清水平有所下降,致使免疫系统不能产生正常应答。Borzooy等 [ 16 ] 对21名乙肝疫苗无应答者和99名乙肝疫苗低应答者的外周血进行分析,发现Th17和Treg细胞互相拮抗,具体表现为无应答者外周血Treg细胞数目增加,而Th17细胞数目减少,同时由Th17分泌产生的细胞因子IL-17在无应答者中的表达水平显著低于低应答者。以上研究提示,Th细胞可通过分泌IL、IFN-γ等细胞因子参与对机体免疫应答的正反馈调节,促进B细胞的分化和活化,从而增强机体产生HBsAg的能力。
1.2. 差异性免疫应答与滤泡辅助性 T 细胞
滤泡辅助性T(follicular helper T,Tfh)细胞通过细胞膜表面共刺激分子和细胞因子的分泌等途径与B细胞相互作用,促进B细胞的活化、增殖和抗体分泌,从而完成对乙肝疫苗的特异性免疫应答。一项研究 [ 17 ] 纳入38名HBsAb阴性的研究对象,分别于乙肝疫苗接种前7天、接种后的第7天和第28天采集其外周血并分析其Tfh细胞表型,结果显示:在接种乙肝疫苗后的第7天和第28天,正常应答者HBsAb滴度显著升高,且Tfh17细胞在Tfh细胞亚群中的占比增加。这表明Tfh17细胞与HBV特异性抗体的产生相关。
Tfh细胞中部分基因或其分泌的细胞因子与接种乙肝疫苗后免疫应答效应相关。Duan等 [ 18 ] 从接受标准化接种的志愿者(既往无乙肝疫苗接种史)中筛选出20名无应答者和45名正常应答者,分析其Tfh细胞功能相关基因,结果表明:无应答者趋化因子CXC亚家族受体5(chemokine CXC subfamily receptor 5,CXCR5)、趋化因子CXC亚家族配体13(chemokine CXC subfamily ligand 13,CXCL13)表达水平均低于正常应答者; CXCR5 和 CXCL13 的多态性与乙肝疫苗免疫应答水平相关,其表达水平的变化可能会影响Tfh细胞与B细胞之间的相互作用。另有研究 [ 19 ] 招募12名志愿者按乙肝疫苗标准流程接种,采集其接种前、接种后第7天和第14天的外周血,对比分析Tfh细胞特有微RNA(microRNA,miRNA)表达谱,发现 miRNA-18a 、 miRNA-17 的表达与Tfh细胞占比呈正相关。这提示靶向 miRNA-18a 和 miRNA-17 调控Tfh细胞分化有助于机体产生正常的免疫应答。
1.3. 差异性免疫应答与 CTL
CTL是一类能够识别并杀伤被病毒感染细胞的T细胞,是清除病毒的重要效应器。为了验证CTL在乙肝疫苗免疫应答过程中的功能,研究人员对7名HBsAb阴性个体按流程接种乙肝疫苗,在首次接种疫苗后的当月,以及接种后的1个月和6个月采集外周血淋巴细胞并分选出CD8 + T细胞,结果发现:在正常应答乙肝疫苗的情况下,CD8 + T细胞克隆增加并分化为CTL,进一步介导机体免疫应答 [ 20 ] 。
Treg细胞是一类能够抑制免疫反应的T细胞,其作用与CTL截然相反,主要通过分泌抑制性细胞因子或直接与效应性T细胞接触完成负反馈免疫调节,乙肝疫苗低/无应答者的出现与该细胞相关。一项研究 [ 21 ] 在100名接种乙肝疫苗的大学生中筛选出12例正常应答者和12例无应答者,结果发现:无应答者外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear cell,PBMC)中Treg比例显著高于正常应答者。这提示Treg可能参与了免疫应答的抑制机制。另有研究 [ 22 ] 对405名乙肝5项阴性者在接种乙肝疫苗第3针1个月后的血清进行检测,从中选出应答者和无应答者,结果显示:在正常应答者中,CD4 + CD25 + Treg细胞在CD4 + T细胞中的占比最低;而在无应答者中, Foxp3 mRNA表达水平显著降低。这表明CD4 + CD25 + 和Foxp3 + Treg细胞在一定程度上参与了乙肝疫苗接种的负反馈调节。此外,Bauer等 [ 23 ] 对肝移植患者接种乙肝疫苗后的情况进行分析,发现Treg细胞产生的IL-10会抑制Th1细胞的生成,可以此为切入点研发针对Treg细胞的安全性药物,从而增强疫苗的功效。研究 [ 24 ] 对接种乙肝疫苗后无应答的HIV感染人群的Treg细胞进行分析,结果显示其体内HBsAb水平与Treg细胞数呈负相关,这可能是因Treg细胞与抗原特异性T细胞和B细胞相互作用,从而抑制体内HBsAb水平的升高。
2. 机体对乙肝疫苗的差异性免疫应答与 TCR 免疫组库
TCR免疫组库是机体内免疫循环中TCR编码基因的总和,反映特定时间点机体对外界刺激的免疫应答能力,其多样性与机体免疫力的强弱相关 [ 25 - 26 ] 。TCR本质上是一种异源性二聚体,其多样性主要来源于TCR基因重排。TCR通过V、D、J、C基因片段重排形成多样性的互补决定区(complementarity-determining regions,CDRs),包括CDR1、CDR2、CDR3。其中,CDR3是最具多样性的CDRs组库 [ 27 ] ,而T细胞受体β链可变区(T cell receptor beta variable, TRBV )基因的不同会影响CDR3的构成 [ 28 ] 。机体依靠庞大的免疫组库进行免疫应答,TCR的V基因片段能与抗原表位特异性结合,而CDR3则直接与抗原特异性空间构象结合。因此疫苗接种后TCR CDR3组库的变化情况,在一定程度上能够反映出疫苗对机体TCR免疫组库多样性的影响,以及这种多样性对特异性免疫应答的影响 [ 29 - 30 ] 。
2.1. 超高 / 高免疫应答与 TCR CDR3 组库
机体的免疫应答程度与TCR免疫组库的多样性呈正相关,而 TRBV 基因的取用表达以及CDR3氨基酸序列的排序和取用能反映免疫组库的多样性。一项研究 [ 27 ] 对5名规范接种乙肝疫苗志愿者的PBMC进行TCR测序后发现正常免疫应答个体的TCRβ链多样性均显著增加。这提示免疫组库多样性能够反映机体对乙肝疫苗的免疫应答效果。另一研究 [ 31 ] 通过分析健康成年人接种乙肝疫苗后 TRVB 基因亚群的变化,发现正常应答者 Vβ6、Vβ14 表达上调,而 Vβ4、Vβ9 表达下调。这提示乙肝疫苗接种引起机体HBsAg特异性T细胞应答,并调控 Vβ 基因亚家族的表达。王小妹等 [ 32 ] 分析了20名不同民族的乙肝5项阴性人员在接种前、后体内CD4 + T细胞CDRs的谱系特征,发现阳性应答人群的部分 TRBV 存在优势取用现象,且不同民族之间对 TRBV 优势取用的部分有所重合,提示有效的乙肝疫苗接种会刺激T细胞免疫组库的变化,且 TRBV 家族的优势取用与民族具有相关性。另有研究 [ 11 ] 通过对不同HBsAb水平志愿者在乙肝疫苗接种前、第1次和第3次接种后的TCR CDR3进行高通量测序分析,发现超高HBsAb水平个体在加强免疫后CDR3存在相同的氨基酸基序Y-NEQ和DTQ,推测部分TCR CDR3基序与超高水平HBsAb的维持相关。
超高/高免疫应答者的免疫组库构成是否优于正常应答者是一个值得研究的方向。Zhao等 [ 33 ] 和Ma等 [ 34 ] 对比成年人接种疫苗后的免疫组库变化,在超高/高应答组与正常应答组间未发现特殊的CDR3序列或高度重合的序列,说明个体之间的差异对TCR组库构成的影响较大,致使暂未发现超高/高应答者与正常应答者T细胞免疫组库的显著差异。尽管如此,该领域仍具研究价值,未来可通过增加样本量或优化分析方法来更有效地发现不同免疫应答水平人群的免疫组库特征。
2.2. 低 / 无免疫应答与 TCR CDR3 组库
TRBV 基因表达与免疫应答水平间存在复杂关联。一方面, TRBV 部分基因高表达与免疫高应答相关,其表达量下降会降低人体免疫应答水平和TCR免疫组库多样性;另一方面, TRBV 部分基因过度扩增会抑制免疫应答。有研究 [ 35 ] 表明:与无应答者相比,正常应答者的CD4 + T细胞中 TRBV 5S2-3 基因取用频率增加。另有研究 [ 36 ] 对80名接种重组乙肝疫苗后无应答和正常应答人群的CD4 + T细胞进行对比分析后发现,CD4 + T细胞的5种 Vβ 基因在无应答组的单克隆改变频率显著较低。这提示CD4 + T细胞中 TRVB 过低的单克隆改变频率会抑制机体对乙肝疫苗的免疫应答。
Yang等 [ 37 ] 对接种过乙肝疫苗的18名阳性应答者和10名阴性应答者的PBMC进行了 TRBV CDR3 基因序列的高通量分析 , 发现相较于阳性应答者,无应答者 TRBV CDR3 的基因多样性和 BV27、BV7-9 频率显著减少;而阳性应答者 BV27/J1-1、BV27/J2-5 及 BV7-9/J2-5 中NTE、QETQ及GG-Q(E)-ETQ基序频率显著增加。这提示TRBV CDR3及其特定基序与免疫应答效果相关。
综上,TCR免疫组库的特异性能一定程度上反映机体对疫苗的应答效果, TRBV 基因的表达水平会影响TCR β链的结构组成,而CDR3氨基酸基序在高应答者与低应答者间存在差异,这些现象有助于评估乙肝疫苗接种后的有效性。
3. TCR 免疫组库相关检测技术
目前T细胞表面标志物和亚群分析主要通过流式细胞术完成,TCR免疫组库的解析探究则主要集中于聚合酶链式反应和高通量测序技术。然而,这些技术缺乏对细胞异质性的分析,难以从单个细胞水平分析相关机制,存在一定局限性。近年来新兴的单细胞测序技术提供了新的思路和方法,通过转录组测序和免疫组库测序能获取T细胞亚群中单个细胞的表达谱,即可得到完整的TCR免疫组库信息。这有助于更好地揭示细胞异质性,并在单个细胞水平深入探索健康或疾病状态下的细胞状态 [ 38 ] 。此外,单细胞测序技术有更高的特异性,能够完成对免疫细胞亚群的精细化分类,有助于探索个体间免疫应答差异性的机制 [ 39 ] 。
当前,单细胞测序技术已被广泛应用于多方面研究。Ren等 [ 40 ] 对196名新型冠状病毒感染(COVID-19)患者和284名对照者的外周血样本进行了单细胞RNA测序分析,构建了PBMC免疫图谱,以此了解COVID-19的发病机制。另有研究 [ 41 ] 采用单细胞转录组学对COVID-19患者的病毒抗原反应性CD4 + T细胞进行分析,来探究不同病情程度下CD4 + T细胞的基因表达模式。单细胞测序技术也能对免疫组库进行分析,其应用范围包括肿瘤微环境免疫图谱的构建 [ 42 ] 、肿瘤免疫治疗毒副反应的机制研究 [ 43 ] 、肿瘤免疫治疗疗效的评估 [ 44 ] 等。此外,单细胞测序对于肿瘤标志物的筛选、免疫检查点的发掘有重要的指导作用。研究 [ 45 ] 对黑色素瘤患者的组织样本进行单细胞RNA测序分析,发现CD8 + T细胞活性与 TCF7 有关,而 CD39 和 TIM3 与耐药性有关。Weng等 [ 46 ] 则对公共数据库中肾透明细胞癌数据集进行分析,鉴定出8个Treg细胞相关预后基因。同时,单细胞测序的数据可以通过公共数据库进行分享,采用生物信息学等方法可完成对各种免疫相关疾病机制的深度分析。Liang等 [ 47 ] 利用公共数据库中的肝细胞癌数据集分析了肿瘤细胞的异质性,并发掘出与肿瘤异常增殖相关基因。
免疫组库分析和单细胞转录测序在其他疾病等领域的应用为探究乙肝疫苗免疫应答机制提供了新的思路和方向,通过单细胞测序分析疫苗免疫应答差异有助于进一步了解人体免疫系统的应答过程,为开发更高效的乙肝疫苗和更有效的接种策略提供等提供新的基础和理论支持。
4. 结 语
乙肝疫苗的接种效果存在个体差异,从而出现高、低、无应答现象。现阶段的研究表明,T细胞以及其亚群和TCR免疫组库对免疫系统的调节与差异应答相关,Th细胞、Tfh细胞对免疫应答呈正反馈调节,CTL通过识别并杀死HBV感染的细胞介导机体免疫应答而Treg通过负反馈调节抑制免疫应答的产生, TRBV 家族相关基因高表达与机体高免疫应答相关。新兴的单细胞测序技术能够对乙肝疫苗接种后个体免疫应答的差异性进行转录组和免疫组库分析,有望从单个细胞水平揭示个体差异性免疫应答的机制,为新型疫苗的研发提供新的思路。
基金资助
国家自然科学基金(82060307)。This work was supported by the National Natural Science Foundation of China (82060307).
利益冲突声明
作者声称无任何利益冲突。
作者贡献
韩智勇 文献查阅与整理,论文撰写与修改;王丹 论文修改;贺晓燕 论文指导与修改;夏嫱 论文指导。所有作者阅读并同意最终的文本。
参考文献
GBD 2019 Hepatitis B Collaborators . Global, regional, and national burden of hepatitis B, 1990-2019: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2019[J]. Lancet Gastroenterol Hepatol, 2022, 7(9): 796-829. 10.1016/s2468-1253(22)00124-8. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] 王富珍, 郑徽, 孙校金, 等. 中国控制乙型病毒性肝炎的成就与展望[J]. 中国疫苗和免疫, 2019, 25(5): 487-492. 10.19914/j.cjvi.2019.05.001. [ DOI ] [ Google Scholar ]; WANG Fuzhen, ZHENG Hui, SUN Xiaojin, et al. Achievements and prospects for hepatitis B prevention and control in China[J]. Chinese Journal of Vaccines and Immunization, 2019, 25(5): 487-492. 10.19914/j.cjvi.2019.05.001. [ DOI ] [ Google Scholar ] Doi H, Yoshio S, Yoneyama K, et al. Immune determinants in the acquisition and maintenance of antibody to hepatitis B surface antigen in adults after first-time hepatitis B vaccination[J]. Hepatol Commun, 2019, 3(6): 812-824. 10.1002/hep4.1357. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Zhang W, Sun H, Sun R, et al. HBV immune tolerance of HBs-transgenic mice observed through parabiosis with WT mice[J]. Front Immunol, 2022, 13: 993246. 10.3389/fimmu.2022.993246. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] 侯莹. 乙肝疫苗接种后无/低应答原因分析及加强对策的进展[J]. 医学理论与实践, 2017, 30(8): 1123-1124, 1127. 10.19381/j.issn.1001-7585.2017.08.014. [ DOI ] [ Google Scholar ]; HOU Ying. Cause analysis of no/low response after hepatitis B vaccination and progress in strengthening countermeasures[J]. The Journal of Medical Theory and Practice, 2017, 30(8): 1123-1124, 1127. 10.19381/j.issn.1001-7585.2017.08.014. [ DOI ] [ Google Scholar ] Zhang W, Han L, Lin C, et al. Surface antibody and cytokine response to recombinant Chinese hamster ovary cell (CHO) hepatitis B vaccine[J]. Vaccine, 2011, 29(37): 6276-6282. 10.1016/j.vaccine.2011.06.045. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] 周桃梅. 乙肝疫苗接种后不同应答人群的T细胞亚群观察[D]. 长沙: 中南大学, 2008. [ Google Scholar ]; ZHOU Taomei. Observation on T cell subsets of different respondents after hepatitis B vaccination[D]. Changsha: Central South University, 2008. [ Google Scholar ] Seremba E, Ocama P, Ssekitoleko R, et al. Immune response to the hepatitis B vaccine among HIV-infected adults in Uganda[J]. Vaccine, 2021, 39(8): 1265-1271. 10.1016/j.vaccine.2021.01.043. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Pollack TM, Trang LTT, Ngo L, et al. Response to hepatitis B vaccination among HIV-infected adults in Vietnam[J]. J Virus Erad, 2016, 2(2): 102-106. 10.1016/S2055-6640(20)30471-4. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Bekele Y, Berzofsky JA, Chiodi F. Undetectable anti-HBs antibodies: need of a booster dose for HIV-1-infected individuals[J]. Vaccines, 2021, 9(12): 1484. 10.3390/vaccines9121484. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] 陈剑霞. HBV疫苗接种后超高和极低HBsAb水平志愿者HLA组成及TCR β CDR3受体库动态特征分析[D]. 遵义: 遵义医科大学, 2022. 10.27680/d.cnki.gzyyc.2022.000298. [ DOI ] [ Google Scholar ]; CHEN Jianxia. Analysis of HLA composition and differences of TCR β CDR3 receptor in volunteers with ultrahigh and extremely low HBsAb levels after HBV vaccination[D]. Zunyi: Zunyi Medical University, 2022. 10.27680/d.cnki.gzyyc.2022.000298. [ DOI ] [ Google Scholar ] Doedée AM, Kannegieter N, Öztürk K, et al. Higher numbers of memory B-cells and Th2-cytokine skewing in high responders to hepatitis B vaccination[J]. Vaccine, 2016, 34(19): 2281-2289. 10.1016/j.vaccine.2015.12.027. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Sabry R, Abu Zahab Mohamed Z, Abdallah AM. Relationship between Th1 and Th2 cytokine serum levels and immune response to Hepatitis B vaccination among Egyptian health care workers[J]. J Immunoassay Immunochem, 2018, 39(5): 496-508. 10.1080/15321819.2018.1509871. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Huang Y, Yang Y, Wu T, et al. Complementary presence of HBV humoral and T-cell response provides protective immunity after neonatal immunization[J]. J Clin Transl Hepatol, 2022, 10(4): 660-668. 10.14218/JCTH.2021.00272. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Jafarzadeh A, Shokri F. The antibody response to HBs antigen is regulated by coordinated Th1 and Th2 cytokine production in healthy neonates[J]. Clin Exp Immunol, 2003, 131(3): 451-456. 10.1046/j.1365-2249.2003.02093.x. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Borzooy Z, Streinu-Cercel A, Mirshafiey A, et al. IL-17 and IL-22 genetic polymorphisms in HBV vaccine non- and low-responders among healthcare workers[J]. Germs, 2016, 6(1): 14-20. 10.11599/germs.2016.1084. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Gao X, Luo K, Wang D, et al. T follicular helper 17 (Tfh17) cells are superior for immunological memory maintenance[J]. eLife, 2023, 12: e82217. 10.7554/eLife.82217. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Duan Z, Chen X, Liang Z, et al. Genetic polymorphisms of CXCR5 and CXCL13 are associated with non-responsiveness to the hepatitis B vaccine[J]. Vaccine, 2014, 32(41): 5316-5322. 10.1016/j.vaccine.2014.07.064. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Xu X, Li Y, Liang Y, et al. MiR-18a and miR-17 are positively correlated with circulating PD-1 + ICOS + follicular helper T cells after hepatitis B vaccination in a Chinese population[J]. BMC Immunol, 2018, 19(1): 25. 10.1186/s12865-018-0263-y. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Höhn H, Neukirch C, Freitag K, et al. Longitudinal analysis of the T-cell receptor (TCR)-VA and-VB repertoire in CD8 + T cells from individuals immunized with recombinant hepatitis B surface antigen[J]. Clin Exp Immunol, 2002, 129(2): 309-317. 10.1046/j.1365-2249.2002.01841.x. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] 杨燕, 杨曌. 乙肝疫苗无应答者外周血Treg细胞的PD-1表达研究[J]. 现代医药卫生, 2009, 25(18): 2737-2738. [ Google Scholar ]; YANG Yan, YANG Zhao. Study of PD-1 expression in regulatory T cells of non-responders after hepatitis B surface antigen vaccine immunization[J]. Modern Medicine & Health, 2009, 25(18): 2737-2738. [ Google Scholar ] 李金成, 谭德明, 刘洪波, 等. 调节性T淋巴细胞对成人乙型肝炎疫苗接种免疫应答的影响[J]. 中华肝脏病杂志, 2010, 18(10): 726-730. 10.3760/cma.j.issn.1007-3418.2010.10.002. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ]; LI Jincheng, TAN Deming, LIU Hongbo, et al. The roles of CD4 + CD25 + T regulatory cells and Foxp3 mRNA expression in the subjects with and without responses to hepatitis B virus vaccination[J]. Chinese Journal of Hepatology, 2010, 18(10): 726-730. 10.3760/cma.j.issn.1007-3418.2010.10.002. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Bauer T, Günther M, Bienzle U, et al. Vaccination against hepatitis B in liver transplant recipients: pilot analysis of cellular immune response shows evidence of HBsAg-specific regulatory T cells[J]. Liver Transpl, 2007, 13(3): 434-442. 10.1002/lt.21061. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] del Pozo Balado MD, Leal M, Méndez Lagares G, et al. Increased regulatory T cell counts in HIV-infected nonresponders to hepatitis B virus vaccine[J]. J Infect Dis, 2010, 202(3): 362-369. 10.1086/653707. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Aversa I, Malanga D, Fiume G, et al. Molecular T-cell repertoire analysis as source of prognostic and predictive biomarkers for checkpoint blockade immunotherapy[J]. Int J Mol Sci, 2020, 21(7): 2378. 10.3390/ijms21072378. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] 张敏敏. 活动期与缓解期SLE患者外周血TCR α CDR3、TCRβ CDR3组库特征分析及免疫相关基因筛选[D]. 遵义: 遵义医科大学, 2021. 10.27680/d.cnki.gzyyc.2021.000329. [ DOI ] [ Google Scholar ]; ZHANG Minmin. Analysis of characteristics of TCR α CDR3 and TCR β CDR3 groups in peripheral blood of SLE patients in active and remission stages and screening of immune-related genes[D]. Zunyi: Zunyi Medical University, 2021. 10.27680/d.cnki.gzyyc.2021.000329. [ DOI ] [ Google Scholar ] Miyasaka A, Yoshida Y, Wang T, et al. Next-generation sequencing analysis of the human T-cell and B-cell receptor repertoire diversity before and after hepatitis B vaccination[J]. Hum Vaccin Immunother, 2019, 15(11): 2738-2753. 10.1080/21645515.2019.1600987. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Fozza C, Barraqueddu F, Corda G, et al. Study of the T-cell receptor repertoire by CDR3 spectratyping. [J]. J Immunol Methods, 2017, 440: 1-11. https://10.1016/j.jim.2016.11.001 . [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Chen J, Liang Z, Lu F, et al. Toll-like receptors and cytokines/cytokine receptors polymorphisms associate with non-response to hepatitis B vaccine[J]. Vaccine, 2011, 29(4): 706-711. 10.1016/j.vaccine.2010.11.023. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Yuh K, Sugyo S, Nakamura K, et al. Analysis of human T-cell antigen receptor variable β gene usage following vaccination with recombinant HBsAg[J]. Dig Dis Sci, 1998, 43(4): 880-886. 10.1023/A:1018846921408. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] 李菁华, 张学英, 李长城, 等. 乙肝疫苗免疫前后人TCRVβ基因亚家族取用表达的研究[J]. 中国免疫学杂志, 2002, 18(4): 262-263, 267. [ Google Scholar ]; LI Jinghua, ZHANG Xueying, LI Changcheng, et al. Study on selective usage of human T-cell antigen receptor variable β gene subfamily before and after vaccination with HBsAg[J]. Chinese Journal of Immunology, 2002, 18(4): 262-263, 267. [ Google Scholar ] 王小妹, 毕晓英, 马锐, 等. 不同民族HBV疫苗志愿接种者PBL中CD4 + T细胞TCRβ链CDR3谱系的监测及CDR3分子特征初步分析[J]. 遵义医科大学学报, 2021, 44(1): 28-35. 10.14169/j.cnki.zunyixuebao.2021.0006. [ DOI ] [ Google Scholar ]; WANG Xiaomei, BI Xiaoying, MA Rui, et al. Monitoring of CD4 + T cell TCRβ chain CDR3 genealogy and preliminary analysis of CDR3 molecular characteristics in HBV vaccine voluntary vaccination in different ethnic groups[J]. Journal of Zunyi Medical University, 2021, 44(1): 28-35. 10.14169/j.cnki.zunyixuebao.2021.0006. [ DOI ] [ Google Scholar ] Zhao M, Li X, Xie S, et al. The dynamics and association of B and T cell receptor repertoires upon antibody response to hepatitis B vaccination in healthy adults[J]. Hum Vaccin Immunother, 2021, 17(9): 3203-3213. 10.1080/21645515.2021.1913028. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Ma L, Wang X, Bi X, et al. Characteristics peripheral blood IgG and IgM heavy chain complementarity determining region 3 repertoire before and after immunization with recombinant HBV vaccine[J]. PLoS One, 2017, 12(1): e0170479. 10.1371/journal.pone.0170479. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Soroosh P, Shokri F, Azizi M, et al. Analysis of T-cell receptor beta chain variable gene segment usage in healthy adult responders and nonresponders to recombinant hepatitis B vaccine[J]. Scand J Immunol, 2003, 57(5): 423-431. 10.1046/j.1365-3083.2003.01256.x. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] 宋玉国, 熊英, 宋宇, 等. 乙肝疫苗无应答者CD4 + T细胞TCR Vβ基因克隆化特征的研究[J]. 中国免疫学杂志, 2011, 27(12): 1059-1061, 1065. 10.3969/j.issn.1000-484X.2011.1.001. [ DOI ] [ Google Scholar ]; SONG Yuguo, XIONG Ying, SONG Yu, et al. Analysis of CD4 + T cell TCR gene in non responders for hepatitis B vaccine[J]. Chinese Journal of Immunology, 2011, 27(12): 1059-1061, 1065. 10.3969/j.issn.1000-484X.2011.1.001. [ DOI ] [ Google Scholar ] Yang J, Li Y, Ye J, et al. Characterization of the TCR β chain repertoire in peripheral blood from hepatitis B vaccine responders and non-responders[J]. J Inflamm Res, 2022, 15: 939-951. 10.2147/JIR.S347702. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Shlesinger D, Hong KL, Shammas G, et al. Single-cell immune repertoire sequencing of B and T cells in murine models of infection and autoimmunity[J]. Genes Immun, 2022, 23(6): 183-195. 10.1038/s41435-022-00180-w. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] 路大峰, 罗正汉, 汪春晖. 单细胞测序技术原理及其应用研究进展[J]. 中华卫生杀虫药械, 2021, 27(3): 280-284. 10.19821/j.1671-2781.2021.0.024. [ DOI ] [ Google Scholar ]; LU Dafeng, LUO Zhenghan, WANG Chunhui. Single cell sequencing technology and its application and prospect[J]. Chinese Journal of Hygienic Insecticides & Equipments, 2021, 27(3): 280-284. 10.19821/j.1671-2781.2021.0.024. [ DOI ] [ Google Scholar ] Ren X, Wen W, Fan X, et al. COVID-19 immune features revealed by a large-scale single-cell transcriptome atlas[J/OL]. Cell, 2021, 184(7): 1895-1913. e19[2024-03-13]. 10.1016/j.cell.2021.01.053. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Meckiff BJ, Ramírez-Suástegui C, Fajardo V, et al. Imbalance of regulatory and cytotoxic SARS-CoV-2-reactive CD4 + T cells in COVID-19[J/OL]. Cell, 2020, 183(5): 1340-1353. e16[2024-03-13]. 10.1016/j.cell.2020.10.001. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Azizi E, Carr AJ, Plitas G, et al. Single-cell map of diverse immune phenotypes in the breast tumor microenvironment [J/OL]. Cell, 2018, 174(5): 1293-1308. e36[2024-03-13]. 10.1016/j.cell.2018.05.060. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Lozano AX, Chaudhuri AA, Nene A, et al. T cell characteristics associated with toxicity to immune checkpoint blockade in patients with melanoma[J]. Nat Med, 2022, 28(2): 353-362. 10.1038/s41591-021-01623-z. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Krishna C, DiNatale RG, Kuo FS, et al. Single-cell sequencing links multiregional immune landscapes and tissue-resident T cells in ccRCC to tumor topology and therapy efficacy[J/OL]. Cancer Cell, 2021, 39(5): 662-677. e6[2024-03-13]. 10.1016/j.ccell.2021.03.007. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Sade-Feldman M, Yizhak K, Bjorgaard SL, et al. Defining T cell states associated with response to checkpoint immunotherapy in melanoma[J/OL]. Cell, 2018, 175(4): 998-1013. e20[2024-03-13]. 10.1016/j.cell.2018.10.038. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Weng KQ, Liu JY, Li H, et al. Identification of Treg-related prognostic molecular subtypes and individualized characteristics in clear cell renal cell carcinoma through single-cell transcriptomes and bulk RNA sequencing[J]. Int Immunopharmacol, 2024, 130: 111746. 10.1016/j.intimp.2024.111746. [ DOI ] [ PubMed ] [ Google Scholar ] Liang J, Chen W, Ye J, et al. Single-cell transcriptomics analysis reveals intratumoral heterogeneity and identifies a gene signature associated with prognosis of hepatocellular carcinoma[J]. Biosci Rep, 2022, 42(2): BSR20212560. 10.1042/BSR20212560. [ DOI ] [ PMC free article ] [ PubMed ] [ Google Scholar ]Articles from Journal of Central South University Medical Sciences are provided here courtesy of Central South University