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MLKL靶点介绍

蛋白功能

MLKL在TNF诱导的程序性细胞坏死过程中起关键作用。

MLKL属于蛋白激酶超家族,包含一个蛋白激酶样结构域,但是蛋白激酶结构域无催化活性。是拥有激酶结构域,但是没有激酶功能的假激酶。

MLKL在被RIPK3磷酸化后激活,定位于质膜并执行以钙流入和质膜损伤为特征的坏死性凋亡。

除了 TNF 诱导的坏死性凋亡外,细胞核内也可能发生坏死性凋亡。在被 ZBP1 激活后,MLKL 被细胞核中的 RIPK3 磷酸化,导致核被膜破坏和细胞 DNA 泄漏到细胞质中。

蛋白特性

MLKL与 RIPK3 的相互作用是有物种特异性的:人类 MLKL 仅与人类 RIPK3 相互作用,而不与小鼠 RIPK3 相互作用。

磷酸化修饰的MLKL(p-MLKL)是坏死性凋亡的触发因素。它不存在于正常组织中,只能在感染、细胞受损或老化组织中检测到。

蛋白表达

MLKL激活后会形成同源三聚体。

p-MLKL需要坏死性凋亡诱导刺激(常用TSZ-TNF a+Smac mimetic+z-VAD)之后,才能检测得到。

蛋白定位

MLKL定位于细胞质,在发生坏死性凋亡时异位至质膜。当响应正粘病毒感染时定位于细胞核。









图二:MLKL ICC实验结果图,Recombinant Alexa Fluor ® 488 Anti-MLKL antibody [EPR17514]  ( ab207901 )。绿色:MLKL,红色:Tubulin。

异构体 & 翻译后修饰

人(Q8NB16):异构体 1-2;30~54 kDa(预测)

小鼠(Q9D2Y4):异构体 1-2;53~54 kDa(预测)

磷酸化修饰。

可以被针对细胞程序性坏死的抑制剂necrosulfonamide(NSA)抑制功能。

MLKL的激活不仅需要被RIPK3 磷酸化,并且需要结合高度磷酸化的磷酸肌醇。

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WB 实验贴士

注意事项

样本需要坏死性凋亡的诱导刺激,如TSZ(TNF a+Smac mimetic+z-VAD)处理之后,才能检测到p-MLKL。

建议检测MLKL信号通路中上下游指标,确认诱导是否成功。

进行磷酸化修饰检测时,请先确认细胞内MLKL总蛋白的含量。

使用新鲜制备的样本,防止冻存样本导致磷酸化修饰减弱,并添加合适的磷酸酶抑制剂。

推荐根据蛋白修饰不同,使用合适的阳性对照。

如果使用常规裂解方法,检测到蛋白信号较弱时,我们建议尝试使用 1% SDS 热裂解方法来制备细胞裂解物。

阳性对照

MLKL:Huvec、HeLa细胞裂解液。

p-MLKL:用 TNF α+Smac mimetic+z-VAD 处理8小时的 HT-29 细胞裂解液。

阴性对照 (弱表达或无表达)

人MLKL敲除HeLa细胞系( ab255408 )/细胞裂解物( ab263788 )。

结果示例



图三: WB- 重组 Anti-MLKL 抗体 [EPR17514] ( ab184718 )
泳道 1 HUVEC细胞裂解液。
泳道 2 HT-29细胞裂解液。
泳道 3 野生型HeLa细胞裂解液。
泳道 4 MLKL敲除的HeLa细胞裂解。
结果描述: MLKL(绿色),GAPDH(红色)。
预测条大小: 54 kDa。
图四: WB- 重组 Anti-MLKL (phospho S345) 抗体 [EPR9515(2)] ( ab196436 )
泳道 1 未处理的 L-929(小鼠结缔组织成纤维细胞)全细胞裂解液。
泳道 2 L-929用 20 ng/ml TNF α ( ab9642 )、100 nM Smac mimetic和 20 µM z-VAD ( ab120382 ) 处理 8 小时,然后获得的全细胞裂解液
检测条带大小: 54 kDa

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参考文献

  1. Liming Sun, Huayi Wang, Zhigao Wang, Sudan He, She Chen, Daohong Liao, Lai Wang, Jiacong Yan, Weilong Liu, Xiaoguang Lei, Xiaodong Wang. Mixed lineage kinase domain-like protein mediates necrosis signaling downstream of RIP3 kinase. Cell. 2012 Jan 20;148(1-2):213-27. doi: 10.1016/j.cell.2011.11.031.
  2. Zhigao Wang, Hui Jiang, She Chen, Fenghe Du, Xiaodong Wang. The mitochondrial phosphatase PGAM5 functions at the convergence point of multiple necrotic death pathways. Cell. 2012 Jan 20;148(1-2):228-43. doi: 10.1016/j.cell.2011.11.030.
  3. Zhenyu Cai, Siriporn Jitkaew, Jie Zhao, Hsueh-Cheng Chiang, Swati Choksi, Jie Liu, Yvona Ward, Ling-Gang Wu, Zheng-Gang Liu. Plasma membrane translocation of trimerized MLKL protein is required for TNF-induced necroptosis. Nat Cell Biol. 2014 Jan;16(1):55-65. doi: 10.1038/ncb2883. Epub 2013 Dec 8.
  4. Lorenzo Galluzzi, Oliver Kepp, Francis Ka-Ming Chan, Guido Kroemer. Necroptosis: Mechanisms and Relevance to Disease. Annu Rev Pathol. 2017 Jan 24;12:103-130. doi: 10.1146/annurev-pathol-052016-100247. Epub 2016 Dec 5.
  5. Junying Yuan, Palak Amin, Dimitry Ofengeim. Necroptosis and RIPK1-mediated neuroinflammation in CNS diseases. Nat Rev Neurosci. 2019 Jan;20(1):19-33. doi: 10.1038/s41583-018-0093-1.

PMID: 22265413, 22265414, 24316671, 27959630, 30467385​