Abstract
背景与目的 免疫治疗的应用大大改善了肺癌患者的临床结局。很大一部分肺癌患者能从程序性死亡受体1(programmed cell death 1, PD-1)/程序性死亡配体1(programmed cell death ligand 1, PD-L1)单抗治疗中获益,然而,仍有一部分耐药患者疗效不佳,临床上迫切需要能早期、便捷识别获益人群的生物标志物。在此,本研究回顾性分析了PD-1抗体治疗对局部晚期无法手术或转移性肺癌患者的疗效,并初步探索了外周血免疫指标与患者临床反应的相关性。 方法 该单中心研究共纳入2020年3月至2021年12月接受PD-1/PD-L1抗体治疗的IIIA-IV期肺癌患者61例,收集PD-1/PD-L1抗体一线或后线治疗的病历数据。检测并分析患者外周血血清中多重Th1和Th2细胞因子水平以及外周血T细胞表型,探索细胞因子水平、T细胞表型等和患者临床反应之间的关系。 结果 入组患者均完成至少2个周期PD-1/PD-L1单抗治疗。其中,42例(68.9%)患者获得部分缓解(partial response, PR),7例(11.5%)患者疾病稳定(stable disease, SD),12例(19.7%)患者疾病进展(progressive disease, PD)。治疗前,疾病控制(disease control rate, DCR)组(有效组)患者外周血干扰素γ(interferon gamma, IFN-γ)(P=0.023)、肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor α, TNF-α)(P=0.007)和白介素5(interleukin 5, IL-5)(P=0.002)水平高于PD组(无效组)患者。此外,PD-1/PD-L1抗体治疗后外周血淋巴细胞绝对计数的减少与疾病进展有关联(P=0.023)。治疗后血清中IL-5(P=0.0027)和IL-10(P=0.0208)水平较治疗前明显升高。 结论 肺癌患者外周血血清IFN-γ、TNF-α和IL-5水平在预测抗PD-1阻断治疗临床疗效方面有一定的作用,肺癌患者外周血淋巴细胞绝对计数的减少与疾病进展有一定相关性,还需要大型前瞻性研究进一步阐明这些生物标志物的价值。
Keywords: 肺肿瘤, 免疫治疗, 生物标志物, 疗效预测
Abstract
Background and objective The application of programmed cell death 1 (PD-1)/programmed cell death ligand 1 (PD-L1) antibodies has greatly improved the clinical outcomes of lung cancer patients. Here, we retrospectively analyzed the efficacy of PD-1 antibody therapy in locally advanced non-surgical or metastatic lung cancer patients, and preliminarily explored the correlation between peripheral blood biomarkers and clinical responses. Methods We conducted a single center study that included 61 IIIA-IV lung cancer patients who received PD-1 antibody treatment from March 2020 to December 2021, and collected the medical record data on PD-1 antibody first-line or second-line treatment. The levels of multiple Th1 and Th2 cytokines in the patient's peripheral blood serum, as well as the phenotype of peripheral blood T cells, were detected and analyzed. Results All the patients completed at least 2 cycles of PD-1 monoclonal antibody treatment. Among them, 42 patients (68.9%) achieved partial response (PR); 7 patients (11.5%) had stable disease (SD); and 12 patients (19.7%) had progressive disease (PD). The levels of peripheral blood interferon gamma (IFN-γ) (P=0.023), tumor necrosis factor α (TNF-α) (P=0.007) and interleukin 5 (IL-5) (P=0.002) before treatment were higher in patients of the disease control rate (DCR) (PR+SD) group than in the PD group. In addition, the decrease in absolute peripheral blood lymphocyte count after PD-1 antibody treatment was associated with disease progression (P=0.023). Moreover, the levels of IL-5 (P=0.0027) and IL-10 (P=0.0208) in the blood serum after immunotherapy were significantly increased compared to baseline. Conclusion Peripheral blood serum IFN-γ, TNF-α and IL-5 in lung cancer patients have certain roles in predicting the clinical efficacy of anti-PD-1 therapy. The decrease in absolute peripheral blood lymphocyte count in lung cancer patients is related to disease progression, but large-scale prospective studies are needed to further elucidate the value of these biomarkers.
Keywords: Lung neoplasms, Immunotherapy, Biomarkers, Efficacy prediction
肺癌是全世界癌症相关死亡的主要原因,每年全球约有160万人死于肺癌 [ 1 , 2 ] 。根据病理类型,肺癌主要分为两种亚型:非小细胞肺癌(non-small cell lung cancer, NSCLC)(占80%-85%)和小细胞肺癌(small cell lung cancer, SCLC)。临床研究 [ 3 , 4 ] 表明,晚期肺癌患者接受程序性死亡受体1(programmed cell death 1, PD-1)或程序性死亡配体1(programmed cell death ligand 1, PD-L1)抗体治疗可改善临床结局,与单纯化疗相比,可改善临床反应率、生存率,并减少治疗相关的不良反应。近十年来,免疫检查点抑制剂(immune checkpoint inhibitors, ICIs)已成为治疗肺癌特别是NSCLC的标准治疗方式。然而,多项抗PD-1治疗的临床试验观察结果 [ 5 , ⇓ - 7 ] 也表明,无论PD-L1表达如何,仅有约15%-25%的肺癌患者对抗PD-1单抗单药治疗有反应。
有一些预测性生物标志物有助于发现可能通过PD-1/PD-L1免疫治疗获益的肿瘤患者。已有研究 [ 8 ] 证明生物标志物PD-L1以及肿瘤突变负荷(tumor mutational burden, TMB)是肿瘤免疫治疗的预测性标志物。然而,在NSCLC中,肿瘤组织中表达的PD-L1是迄今为止唯一被认可的疗效预测因子 [ 9 ] 。这对于选择有治疗反应的患者方面具有很大限制,临床实践中在PD-L1表达阴性的情况下也有很大一部分患者对ICIs有反应。除此之外,大多数患者将同时或序贯接受包括化疗、放疗及靶向治疗等在内的多种治疗,因此PD-L1的表达模式也可能受到这些因素的极大影响。目前,包括TMB、肿瘤微环境、组织基因表达谱 [ 10 ] 等在内的其他预测性生物标志物仍在研究中,然而,这些与肿瘤组织相关的标志物成本高昂且需通过有创操作获取肿瘤组织,实践具有一定难度。因而,迫切需要能更便捷获取的外周血生物标志物来帮助识别有反应的肺癌患者。前期有研究 [ 11 , 12 ] 表明,一部分外周血标志物可能是抗PD-1/PD-L1治疗的潜在预后因素,包括血清标志物,如中性粒细胞-淋巴细胞比率(neutrophil-lymphocyte ratio, NLR)、血小板-淋巴细胞比率(platelet-lymphocyte ratio, PLR)、中性粒细胞计数、单核细胞绝对计数(absolute monocyte count, AMC)、嗜酸性粒细胞计数(absolute eosinophil count, AEC)或血清生物标志物如乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase, LDH)、血浆白蛋白(albumin, ALB)或C反应蛋白(C reactive protein, CRP)。此外,外周血PD-1 + T细胞的T细胞受体(T cell receptors, TCR)谱多样性预测了癌症患者免疫治疗疗效 [ 13 ] 。有研究 [ 14 ] 还表明,治疗前外周血血清白介素(interleukin, IL)等细胞因子水平也可能是预测抗PD-1治疗肿瘤患者的临床疗效和生存率的有效指标。
本研究旨在探索与肺癌患者免疫治疗临床反应相关的外周血免疫指标,从而更便捷、高效地发现能通过PD-1/PD-L1抑制剂治疗获益的肺癌人群。
1 资料和方法
1.1 患者资料
本项单中心研究纳入了61例2020年3月至2021年12月在南京大学附属鼓楼医院肿瘤中心治疗的肺癌患者。患者平均年龄为60岁,男性46例,女性15例。纳入标准:(1)美国东部肿瘤协作组(Eastern Cooperative Oncology Group, ECOG)评分为0-2分,免疫治疗周期数≥2个;(2)IIIA-IV期不可切除非鳞状NSCLC患者、鳞状NSCLC和SCLC患者;(3)自愿接受免疫治疗前后的血液采集,用于血清细胞因子检测和T细胞表型分析。排除标准为活动性自身免疫性疾病、严重感染性疾病或全身免疫抑制使用期间。患者基线特征见 表1 。该回顾性观察研究经过鼓楼医院研究伦理委员会批准通过。
患者基线特征以及临床应答情况(n=61)
EGFR: epidermal growth factor receptor; EOCG PS: Eastern Cooperative Oncology Group performance status; irAEs: immune-related adverse events; PR: partial response; SD: stable disease; PD: progressive disease.
1.2 治疗和研究评估
患者每3周接受含铂标准方案的化疗,包括白蛋白紫杉醇(260 mg/m 2 )或培美曲塞(500 mg/m 2 )联合卡铂[曲线下面积(area under the curve, AUC)=5]、洛铂(30 mg/m 2 )或顺铂(75 mg/m 2 )以及PD-1/PD-L1抗体(帕博利珠单抗200 mg、纳武利尤单抗3 mg/kg、卡瑞利珠单抗200 mg、信迪利单抗200 mg、替雷利珠单抗200 mg、阿特珠单抗1200 mg、度伐利尤单抗1200 mg)治疗。对于维持治疗,根据病理表型,患者使用PD-1/PD-L1抗体治疗,使用或不使用白蛋白紫杉醇或培美曲塞维持。根据实体瘤疗效评价标准(Response Evaluation Criteria in Solid Tumors, RECIST)1.1版,每2个治疗周期评估一次临床疗效。标准为:(1)完全缓解(complete response, CR):靶病灶完全消退;(2)部分缓解(partial response, PR):总靶病灶减少30%以上;(3)疾病稳定(stable disease, SD):总靶病灶减少少于30%或增加少于20%;(4)疾病进展(progressive disease, PD):总靶病灶增加20%以上;(5)疾病控制率(disease control rate, DCR):临床应答或稳定的比例(CR+PR+SD)。
1.3 样品采集和流式细胞术
在首次影像评估的同时采集61例肺癌患者PD-1/PD-L1抗体治疗前后的外周血,进行外周血单个核细胞(peripheral blood mononuclear cell, PBMC)分离和血清的分离,后续进行细胞因子检测以及表面分子流式细胞检测。选择淋巴细胞分泌上清中Th1以及Th2型细胞因子,代表细胞免疫应答以及体液免疫应答。具体实验方法如下:在免疫治疗前一天收集10 mL血液样本,然后在2 h内将样品转移到实验室进行分离。1200 rpm离心7 min后收集上清,加入抗体偶联beads制备混合样品溶液,采用CBA(Cytometric Bead Array, Biolegend, San Diego, CA, USA)分析试剂盒检测IL-2、IL-4、IL-5、IL-6、IL-10、IL-13、干扰素γ(interferon gamma, IFN-γ)和肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor α, TNF-α)。细胞沉淀采用PBS重悬加入Ficoll Plaque(GE, Chicago, IL, USA)离心纯化,制备PBMC悬液,并用CD3、CD4、CD8、CD274、CD279、TIGT、CD27、CD11b、CD33、CD45RO、CD62L、CD127和CD38(Biolegend, San Diego, CA, USA)特异性的荧光流式抗体标记以进行流式细胞分析。
1.4 统计分析
使用GraphPad Prism 9软件和R语言进行统计分析。通过t检验以及非参数Wilcoxon检验分析细胞因子水平、T细胞表型和临床应答之间的统计学差异。P<0.05为差异有统计学意义。